18+

Аутоиммунный гипертиреоз — основные признаки заболевания щитовидной железы

Аутоиммунный гипертиреоз — основные признаки заболевания щитовидной железы

Аутоиммунный гипертиреоз — основные признаки заболевания щитовидной железы

Клинические проявления, иммунопатогенез диффузного токсического зоба

Диффузный токсический зоб (ДТЗ) или болезнь Грейвса — это аутоиммунная патология щитовидной железы, вызванная наличием циркулирующих аутоантител к рецепторам тиреотропного гормона (анти-рТТГ), что ведёт к гипертиреозу.

Развитие ДТЗ связано с нарушением иммунной толерантности к рецептору ТТГ [39, 28] и проявляется тиреотоксикозом, наличием сывороточных антитиреоидных антител (АТА), а также аутореактивных лимфоцитов в железе [16]. У женщин 30–60 лет вероятность развития ДТЗ составляет 3 %, у мужчин — 0,5 %.

Группа авторов-учёных из Узбекистана (Кодиров А. Э., Зиядулаев Ш. Х., Ким А. А., Ташкенбаева Э. Н., Камалов З. С., Олимжонова Ф. Ж.) провела обзор литературы по ДТЗ. Результатом этой работы стала подготовка статьи «Клинические проявления, иммунопатогенез диффузного токсического зоба», которая была опубликована в № 3 «Журнала кардиореспираторных исследований» за 2022 год.

В этой статье были продемонстрированы важнейшие проявления ДТЗ. Проведём краткий обзор этой публикации.

Клинические проявления

Клинические признаки ДТЗ связанны с переизбытком гормонов щитовидной железы и тиреотоксикозом. Патологические изменения касаются разных органов и систем, но наибольшее влияние оказывается на сердечно-сосудистую систему, приводя к формированию так называемого «тиреотоксического сердца».

Под этим термином подразумевается тахикардия (учащение ритма сердца), гипертрофия, дистрофия, кардиосклероз и сердечная недостаточность (СН), развившиеся под воздействием избытка тиреоидных гормонов (ТЕ).

Другие симптомы ДТЗ: тремор, повышенная чувствительность к теплу, снижение массы тела при нормальном рационе питания, тревожность и раздражительность, увеличение размеров щитовидной железы (зоб), повышенная утомляемость, у женщин — нарушение менструального цикла, у мужчин — нарушение потенции [49].

В пожилом возрасте симптоматика более скудная. Так, при исследовании более 3 тысяч пациентов с ДТЗ отмечалось, что более половины больных старше 61 года имели меньше 3 симптомов [2], при этом у них часто мерцательная аритмия выступала в виде ассоциированного признака.

Из 500 тысяч пациентов с ДТЗ, находящихся под наблюдением более 8 лет, в 13 % случаев наблюдалась кумулятивная частота фибрилляции предсердий среди лиц старше 65 лет [43].

В редких случаях тиреотоксикоз вызывает периодические параличи (острый мышечный паралич с выраженной гипокалиемией). Этот симптом чаще возникает у азиатских мужчин на фоне инфекции, употребления алкоголя, высокой углеводной или тяжёлой физической нагрузки [3].

«Тиреоидный шторм» — редкое жизнеугрожающее состояние при тиреотоксикозе, ассоциированное с нарушением печёночной функции, изменением психического состояния, лихорадкой, возбуждением, признаками СН и тахикардией [1]. Спровоцировать его появление могут травмы, операции, роды, инфекционные заболевания, нарушение схемы терапии [49].

Офтальмопатия наблюдается у 30–50 % пациентов с ДТЗ. Характерная триада: экзофтальм (чаще асимметричный), слезотечение, периорбитальный отёк. Прочие признаки: чувство песка в глазах, диплопия (двоение в глазах), дискомфортные ощущения, боли, нечёткость и снижение остроты зрения, нарушение цветовосприятия, конъюнктивит [10, 11, 3].

Офтальмопатии часто сопутствует гипертиреоз. Обострению офтальмопатии способствует стресс [44], курение [36], а также радиойодтерапия при ДТЗ [44].

Дермопатия щитовидной железы или претибиальная микседема встречается при ДТЗ в 1–5 % случаев [29]. Проявляется в виде уплотнения по типу «апельсиновой корочки» и обесцвечивания кожи на передней поверхности голеней с переходом на тыл стоп или отёка кожи в тех же областях [8]. У пациентов с дермопатией встречается и акропатия в виде утолщения пальцев рук или ног [44].

У пациентов с ДТЗ в 16,7 % случаев присутствуют другие аутоиммунные заболевания:

  • болезнь Шегрена (0,8 %);
  • системная красная волчанка (СКВ) и саркоидоз (<0,1 %);
  • сахарный диабет 1 типа (0,9 %);
  •   глютеновая болезнь (1,1 %);
  • рассеянный склероз (0,3 %);
  • ревматическая полимиалгия (1,3 %);
  • ревматоидный артрит (1,9 %);
  • аутоиммунный гастрит (2,4 %);
  • витилиго (2,6 %).

Это говорит о том, что всех пациентов с ДТЗ необходимо обследовать на другие аутоиммунные заболевания [17].

Наличие ДТЗ существенно увеличивает риск развития рака щитовидной железы [30, 2, 3, 45].

ДТЗ имеет стадийное течение, периоды гипертиреоза сочетаются с периодами эутиреоза. Рецидивам гипертиреоза способствуют стрессовые ситуации [44].

Иммунопатогенез

Пусковым моментом для развития ДТЗ служит нарушение толерантности к щитовидной железе вследствие аутоиммунных нарушений у генетически предрасположенных лиц [50].

По результатам проведённых исследований, во время активной фазы ДТЗ преобладает Th1 иммунный ответ, в неактивную фазу происходит переключение на Th2 иммунный ответ [18, 4].

Важное значение в патогенезе аутоиммунной патологии щитовидной железы имеют Т-лимфоциты [41]. К рТТГ вырабатываются антитела, которые подразделяются на тиреостимулирующие антитела (TSAb), тиреоблокирующие антитела (TBAb) и нейтральные антитела [24, 12].

TSAb способствуют развитию гипертиреоза за счёт пролиферации клеток щитовидной железы (тироцитов), роста щитовидной железы и увеличения продукции тиреоидных гормонов (Т4, Т3). Т4 и Т3 подавляет продукцию ТТГ из передней доли гипофиза по механизму отрицательной обратной связи. Роль TBAb и нейтральных антител в патогенезе ДТЗ менее изучена [13, 25].

Основным условием для формирования аутоиммунного ответа являются антиген-специфические Т-клетки [46]. После их активации образуются 2 функциональных подтипа:

  • Th1 участвует в реакциях гиперчувствительности замедленного типа (ГЧЗТ);
  • Th2 участвует в гуморальных иммунных реакциях [42, 5].

Th1 клетки вырабатывают фактор некроза опухоли-β, IFN-γ и ИЛ-2, клетки Th2 вырабатывают целый ряд интерлейкинов (ИЛ-4, ИЛ-5, ИЛ-6 и ИЛ-13). Клетки Th1 участвуют в аутоиммунных реакциях, особенно ярко это проявляется у подтипа Th17, вырабатывающего уникальный ИЛ-17 [14].

У пациентов с ДТЗ определяются активированные Т-клетки как в периферическом русле, так и в самой щитовидной железе [31, 37]. Было выявлено, что доля CD8+ супрессорных/цитотоксических Т-клеток при ДТЗ существенно ниже, чем при аутоиммунном тиреоидите [32].

Подавляющее большинство Т-клеток относятся к подтипу памяти (CD4+, CD29+). На введение аутологичных фолликулярных клеток щитовидной железы или тиреоидных антигенов они отвечают существенным ростом и образованием цитокинов [26, 33].

CD4+ Т-клетки включают в себя:

  • популяцию эффекторных Т-клеток (Teff) (90 %);
  • популяцию Т-регуляторных клеток (Tregs) (10 %) [26].

Основное значение Tregs клеток состоит в предупреждении формирования органоспецифического аутоиммунитета. У пациентов с ДТЗ число Tregs клеток снижено, что отрицательно соотносится с содержанием анти-pTTГ [33].

Было выявлено, что внутрищитовидные Т-клетки преимущественно принадлежат подтипу Th1 [31, 51]. Та же закономерность прослеживалась у ТТГ- Р- чувствительных клонов [19].

В основании аутоиммунной реакции заложено взаимодействие антигенспецифических Т-клеток с органом-мишенью, что ведёт к отбору и распространению аутореактивных клеток [20, 21].

При инициировании иммунного ответа, Т-клетки с рецептором, специфичным для вовлечённого антигена, активируются и клонируются [15, 47, 35, 34]. На начальной стадии ДТЗ развивается специфичный ответ на аутоантигены щитовидной железы. Затем следует распространение иммунного ответа, что ведёт к более широкому применению гена Т-клеточного рецептора.

Анализ экспрессии мРНК Ил-17, ИЛ-6, ИЛ-37 и TNF-α в одноядерных клетках периферической крови у пациентов с ДТЗ продемонстрировал, что они были существенно выше в сравнении с контролем. Уровень ИЛ-37 коррелировал с уровнем ТТГ, ИЛ-17, ИЛ-6, TNF-a и TRAb.

В пациентов в активной фазе ДТЗ уровень мРНК ИЛ-37 и сывороточного белка был существенно выше, чем у здоровых лиц или у лиц в неактивной фазе. ИЛ-37 подавлял выработку ФНО-а, ИЛ-17 и ИЛ-6 в клетках крови. Это подтвердило, что ИЛ-37 обладает защитным противовоспалительным действием при ДТЗ, подавляя образование провоспалительных цитокинов [27].

Результаты научных исследований продемонстрировали, что повышенный риск ДТЗ ассоциирован с промотором SNP rs1800629 в гене TNF-a, особенно у европейцев [48].

Установлено, что полиморфизм ИЛ-6–174 G/C был ассоциирован с риском БГ в доминантной, рецессивной и гомозиготной модели [23]. При исследовании роли метилирования гена ИЛ-6 было установлено, что у пациентов с трудноизлечимой ДТЗ отмечались более низкие уровни метилирования, чем у пациентов с ДТЗ в фазе ремиссии. Это доказывает связь между метилированием гена ИЛ-6 и неизлечимостью ДТЗ [22].

Была также выявлена корреляция между ДТЗ и CCL21 в плазме. Это позволяет рассматривать CCL21 как новый маркер ДТЗ и возможную мишень для терапии пациентов ДТЗ с положительным TRAb [38].

Наиболее ранней реакцией в ответ на рост уровня ТГ является снижение периферического сосудистого сопротивления (ПСС) и сужение венозных сосудов. В итоге усиливается обратный ток крови в правое предсердие, снижается диастолическое давление (ДД) и изменяется сердечный выброс.

Сокращение стенок артерий обусловлено действием ионов Са2+, проникающих в клетки через каналы, подобные кальциевым каналам сердечного миокарда. Схож и сам механизм сокращения, но в гладкомышечных клетках сосудов Са2+ связывается с кальмодулином, активирующим фермент, ответственный за фосфорилирование цепей миозина. Они же активируют формирование перекрёстных связей в актиномиозиновом комплексе, что и способствует сокращению [17].

Заключение

ДТЗ клинически проявляется тиреотоксикозом, присутствием АТА в сыворотке крови, инфильтрацией щитовидной железы аутореактивными лимфоцитами. При ДТЗ аутоиммунная реакция стимулирует выработку TSAb клонами В-клеток, поступающих в щитовидную железу.

Эти антитела имеют ведущее значение в патогенезе ДТЗ и его экстратиреоидных проявлений. Факторы риска ДТЗ вмещают в себя наследственную предрасположенность и взаимодействие между эндогенными факторами и факторами окружающей среды.

В иммунопатогенезе заболевания превалирует Th1‑иммунный ответ, в котором ведущее значение имеют Th1‑хемокины. Th1‑лимфоциты ведут к росту образования IFN-g и TNF-a, что активирует продукцию хемокинов Th1 клетками щитовидной железы, поддерживая аутоиммунный процесс.

ТГ, влияя на стенки артериол, может прямо регулировать ПСС, что приводит к изменению диастолического давления и сердечного выброса.

Источники

  1. Akamizu T, Satoh T, Isozaki O, et al. Diagnostic criteria, clinical features, and incidence of thyroid storm based on nationwide surveys. Thyroid 2012;22:661-79
  2. Antonelli A, Saracino A, Alberti B, et al. High-dose intravenous immunoglobulin treatment in Graves’ ophthalmopathy. Acta Endocrinol 1992;126:13-23.
  3. Antonelli A, Ferrari SM, Frascerra S, et al. Circulating chemokine (CXC motif) ligand (CXCL)9 is increased in aggressive chronic autoimmune thyroiditis, in association with CXCL10. Cytokine 2011;55:288-93.
  4. Antonelli A, Ferrari SM, Corrado A, et al. Autoimmune thyroid disorders. Autoimmun Rev 2015;14:174-80
  5. Abbas AK, Murphy KM, Sher A. Functional diversity of T lymphocytes. Nature. 1996;383:787–793
  6. Boelaert K, Torlinska B, Holder RL, et al. Older subjects with hyperthyroidism present with a paucity of symptoms and signs: a large cross sectional study. J Clin Endocrinol Metabol 2010; 95:2715-26.
  7. Brent GA. Clinical practice. Graves’ disease. N Engl J Med 2008;358:2594-605
  8. Burch HB, Cooper DS. Management of Graves’ disease: a review. JAMA, J Am Med Assoc 2015;314:2544e54.
  9. Chang CC, Cheng CJ, Sung CC, et al. A 10-year analysis of thyrotoxic periodic paralysis in 135 patients: focus on symptomatology and precipitants. Eur J Endocrinol 2013;169:529-36
  10. Dickinson AJ, Perros P. Controversies in the clinical evaluation of active thyroid-associated orbitopathy: use of a detailed protocol with comparative photographs for objective assessment. Clin Endocrinol 2001;55:283-303.;
  11. Davies TF, Burch HB. Clinical features and diagnosis of Graves’ orbitopathy (ophthalmopathy). 2019.
  12. Diana T, Olivo PD, Kahaly GJ. Thyrotropin receptor blocking antibodies. Horm Metab Res 2018;50:853-62
  13. Diana T, Krause J, Olivo PD, et al. Prevalence and clinical relevance of thyroid stimulating hormone receptor-blocking antibodies in autoimmune thyroid disease. Clin Exp Immunol 2017;189: 304-9.
  14. Dardalhon V, Korn T, Kuchroo VK, Anderson AC. Role of Th1 and Th17 cells in organ-specific autoimmunity. J Autoimmun. 2008;31:252–256.
  15. Davies TF, Martin A, Concepcion ES, et al. Evidence of limited variability of antigen receptors on intrathyroidal T cells in autoimmune thyroid disease. N Engl J Med. 1991;325:238–244.
  16. Ferrari SM, Ruffilli I, Elia G, et al. Chemokines in hyperthyroidism. J Clin Transl Endocrinol 2019; 16:100196.
  17. Ferrari SM, Fallahi P, Ruffilli I, et al. The association of other autoimmune diseases in patients with Graves’ disease (with or without ophthalmopathy): review of the literature and report of a large series. Autoimmun Rev 2019;18: 287-92.
  18. Fallahi P, Ferrari SM, Ragusa F, et al. Th1 chemokines in autoimmune endocrine disorders. J Clin Endocrinol Metabol 2019. pii: dgz289. [Epub ahead of print].
  19. Fisfalen ME, Palmer EM, Van Seventer GA, et al. Thyrotropinreceptor and thyroid peroxidase–specific T cell clones and their cytokine profile in autoimmune thyroid disease. J Clin Endocrinol Metab. 1997;82:3655–3663
  20. Fisfalen ME, Palmer EM, Van Seventer GA, et al. Thyrotropinreceptor and thyroid peroxidase–specific T cell clones and their cytokine profile in autoimmune thyroid disease. J Clin Endocrinol Metab. 1997;82:3655–3663. 161.
  21. Huppa JB, Davis MM. The interdisciplinary science of T-cell recognition. Adv Immunol. 2013;119:1–50.
  22. Hirai N, Watanabe M, Inoue N, et al. Association of IL6 gene methylation in peripheral blood cells with the development and prognosis of autoimmune thyroid diseases. Autoimmunity 2019; 52: 251-5.
  23. Imani D, Rezaei R, Razi B, et al. Association between IL6-174 G/C polymorphism and graves’ disease: a systematic review and meta analysis. Acta Med Iran 2017;55:665-71.
  24. Kotwal A, Stan M. Thyrotropin receptor antibodies-an overview. Ophthalmic Plast Reconstr Surg 2018; 34: S20e7.
  25. Kahaly GJ, Diana T, Kanitz M, et al. Prospective trial of functional thyrotropin receptor antibodies in graves’ disease. J Clin Endocrinol Metabol 2019. pii: dgz292.  
  26. Kronenberg M, Rudensky A. Regulation of immunity by selfreactive T cells. Nature. 2005;435:598–604. 158.
  27. Li Y,Wang Z, Yu T, et al. Increased expression of IL-37 in patients with Graves’ disease and its contribution to suppression of proinflammatory cytokines production in peripheral blood mononuclear cells. PloS One 2014;9:107183.
  28. McLachlan SM, Rapoport B. Breaking tolerance to thyroid antigens: changing concepts in thyroid autoimmunity. Endocr Rev 2014; 35:59- 105
  29. Menconi F, Marcocci C, Marin_o M. Diagnosis and classification of Graves’ disease. Autoimmun Rev 2014;13:398-402
  30. MacFarland SP, Bauer AJ, Adzick NS, et al. Disease burden and outcome in children and young adults with concurrent Graves disease and differentiated thyroid carcinoma. J Clin Endocrinol Metabol 2018; 103: 2918-25
  31. Morshed SA, Latif R, Davies TF. Delineating the autoimmune mechanisms in Graves’ disease. Immunol Res. 2012; 54: 191–203.
  32. Martin A, Davies TF. T cells and human autoimmune thyroid disease: Emerging data show lack of need to invoke suppressor T-cell problems. Thyroid. 1992; 2: 247–261
  33. Mao C, Wang S, Xiao Y, et al. Impairment of regulatory capacity of CD4+CD25+ regulatory T cells mediated by dendritic cell polarization and hyperthyroidism in Graves’ disease. J Immunol. 2011; 186: 4734–4743.
  34. McIntosh RS, Watson PF, Pickerill AP, et al. No restriction of intrathyroidal T cell receptor V alpha families in the thyroid of Graves’ disease. Clin Exp Immunol. 1993; 91: 147–152.
  35. Nakashima M, Kong YM, Davies TF. The role of T cells expressing TcR V beta 13 in autoimmune thyroiditis induced by transfer of mouse thyroglobulin-activated lymphocytes: Identification of two common CDR3 motifs. Clin Immunol Immunopathol. 1996; 80: 204–210.
  36. Perricone C, Versini M, Ben-Ami D, et al. Smoke and autoimmunity: the fire behind the disease. Autoimmun Rev 2016; 15: 354e74.
  37. Pan D, Shin YH, Gopalakrishnan G, Hennessey J, De Groot LJ. Regulatory T cells in Graves’ disease. Clin Endocrinol (Oxf). 2009; 71: 587– 593.
  38. Qi Y, Li X, Zhang Q, et al. Increased chemokine (C-C motif) ligand 21 expression and its correlation with osteopontin in Graves’ disease. Endocrine 2015;50:123-9.
  39. Romagnani S. The Th1/Th2 paradigm and allergic disorders. Allergy 1998;53:12-5.
  40. Rapoport B, McLachlan SM. Graves’ hyperthyroidism is antibody-mediated but is predominantly a Th1-type cytokine disease. J Clin Endocrinol Metabol 2014;99:4060-1.
  41. Rapoport B, McLachlan SM. Reflections on thyroid autoimmunity: a personal overview from the past into the future. Horm Metab Res 2018; 50: 840-52.
  42. Romagnani S. Regulation of the T cell response. Clin Exp Allergy. 2006; 11: 1357–1366.
  43. Selmer C, Olesen JB, Hansen ML, et al. The spectrum of thyroid disease and risk of new onset atrial fibrillation: a large population cohort study. BMJ: Br Med J/Br Med Assoc 2012;345:7895.6.
  44. Smith TJ, Hegedüs L. Graves’ disease. N Engl J Med 2016; 375: 1552-65.
  45. Spinelli C, Bertocchini A, Antonelli A, et al. Surgical therapy of the thyroid papillary carcinoma in children: experience with 56 patients < or ¼16 years old. J Pediatr Surg 2004; 39: 1500-5.
  46. Smith TJ. Is IGF-I receptor a target for autoantibody generation in Graves’ disease? J Clin Endocrinol Metab. 2013; 98: 515–518.
  47. Tandon N, Freeman MA, Weetman AP. T cell response to synthetic TSH receptor peptides in Graves’ disease. Clin Exp Immunol. 1992; 89: 468–473.
  48. Tu Y, Fan G, Zeng T, et al. Association of TNF-a promoter polymorphism and Graves’ disease: an updated systematic review and metaanalysis. Biosci Rep 2018;38.
  49. Vaidya B, Pearce SH. Diagnosis and management of thyrotoxicosis. BMJ: Br Med J/Br Med Assoc 2014; 349: g5128.
  50. Wemeau JL, Klein M, Sadoul JL, et al. Graves’ disease: introduction, epidemiology, endogenous and environmental pathogenic factors. Ann Endocrinol 2018; 79: 599-607.
  51. Watson PF, Pickerill AP, Davies R, Weetman AP. Analysis of cytokine gene expression in Graves’ disease and multinodular goiter. J Clin Endocrinol Metab. 1994; 79: 355–360.

2206 просмотров

Поделиться ссылкой с друзьями ВКонтакте Одноклассники

Нашли ошибку? Выделите текст и нажмите Ctrl+Enter.